北京理工大学梁敏敏

baoen

梁敏敏，北京理工大学教授。主要从事仿生纳米材料的生物工程化制备及其生物医学应用方面的研究。（1）首次报道了人铁蛋白天然识别肿瘤的新特性，阐明了铁蛋白由受体TfR1介导的肿瘤识别机制，并在大量临床样本上验证了铁蛋白的肿瘤识别特异性，体现了铁蛋白的重大临床应用价值。研究成果发表在《Nature Nanotechnology》，入选中国十大科技进展及中国科学院重大科技成果；（2）研制出具有重大临床应用前景的仿生纳米材料，实现了仿生纳米铁蛋白的生物工程化规模制备，建立了g 级生产工艺，制定了相应质控标准，研究成果发表在《Nature Protocols》；（3）利用仿生纳米铁蛋白的生物相容性及肿瘤靶向性，将抗癌药物高剂量装载于铁蛋白纳米空腔内，制备了铁蛋白纳米药物靶向递送系统，实现了抗癌药物的高效体内靶向输送，仅单次给药就有效抑制了肿瘤成长，研究成果发表在《PNAS》；（4）发现仿生铁蛋白的癌细胞高效转运通路，能够将信号分子高浓度富集于肿瘤细胞，克服了核医学与磁共振两种成像方式在灵敏度上存在的巨大差异（灵敏度相差107倍），实现了体内癌灶最高分辨率的形态学成像（磁共振）及最佳灵敏度的功能成像（核医学），研究成果发表在《ACS Nano》；（5）开发了基于仿生纳米铁蛋白的肿瘤病理诊断试剂盒，相关专利获得国内及美欧日授权，专利实现成果转让，并于2018年获两项医疗器械注册证书。仿生纳米铁蛋白用于肿瘤多模诊疗的工作是迄今为数不多的由中国人发现、国际认可并实现成果转化的系统性工作。鉴于以上重要学术贡献，申请人于2014年入选“中国科学院青年创新促进会”， 2018年入选中科院青年创新促进会优秀会员，多次应邀在国际、国内学术会议上做大会/特邀报告10余次。担任JACS，Nature Nanotechnology，PNAS 等30多个国际期刊的学术审稿人。2017年获优国家优秀青年科学基金，2018年获第三届中源协和生命医学奖。


姓 名： 梁敏敏
出生年月： 1978年8月30日
学 位： 博士
职 称： 教授
联系地址： 北京海淀区中关村南大街5号
邮政编码：  100081
Email：   mmliang@bit.edu.cn


教育经历：
2005.03-2008.03 中国科学院生态环境研究中心，博士
2002.09-2005.03 北京理工大学，硕士
1997.09-2001.07 山东轻工业学院，学士


工作经历：
2019.06-至今   教授，北京理工大学
2014.12-2019.06 四级研究员，中国科学院生物物理研究所
2010.09-2014.12 副研究员，中国科学院生物物理研究所
2008.03-2010.09 美国麻州大学医学院，博士后
2001.07-2002.09 中国石油大学卓越公司，工程技术人员


研究领域：
纳米生物学


社会任职：
中国科学院青年创新促进会会员
中国生物物理学会，纳米酶分会委员


获奖情况：
2018年，第三届中源协和生命医学奖（每年获奖者10位）
2018年，中科院青年促进会优秀会员
2017年，国家基金委优秀青年科学基金项目获得者
2014年，入选“中国科学院青年创新促进会”
2010年，获全国优秀博士论文提名奖
2009年，获中科院优秀博士论文奖
2007年，获中科院院长优秀奖


科研项目：
国家自然科学基金-优秀青年科学基金项目（81722024），磁性纳米材料及肿瘤多模诊疗，2018.01-2020.12，项目负责人，130万；
国家重点研发计划-纳米科技专项（2017YFA0205501），铁基纳米酶多酶催化效应及催化机制，2017.07-2022.06，课题一负责人，590万；
中科院前沿科学重点研究项目，纳米材料酶催化机制与应用研究，2016.8-2020.12，课题负责人，500万；
国家自然科学基金-面上项目（81571728），新型仿生磁纳米粒子用于早期肿瘤成像诊断，2016.1-2019.12，项目负责人，78万；
中国青年促进会基金-中科院人才发展战略，2014-2017，项目负责人，40万；
国家自然科学基金-青年基金项目（81201698），新型仿生纳米颗粒用于体外癌症病理诊断，2013-2015，项目负责人，28万；
中科院国防科技创新项目（Y1CA0301），2011-2013，项目负责人，30万。


代表性论文：
1.Nanozymes: from new concepts, mechanisms, and standards to applications,  Acc. Chem. Res , 2019, 52 , 2190-2220.
2.Bioengineered magnetoferritin nanozymes for pathological identification of high-risk and ruptured atherosclerotic plaques in humans.  Nano Research , 2019, 12 , 863-868.  
3.Bioengineered H-Ferritin nanocages for quantitative imaging of vulnerable plaques in atherosclerosis, ACS nano , 2018, 12 (9), 9300-9308  
4.Standardized assays for determining the catalytic activity and kinetics of peroxidase-like nanozymes, Nature Protocols, 2018, 13: 1506-1520.
5.Bioengineered Magnetoferritin Nanoprobes for Single-Dose Nuclear-Magnetic Resonance Tumor Imaging. ACS nano , 2016, 10(4): 4184-91.
6.H-ferritin-nanocaged doxorubicin nanoparticles specifically target and kill tumors with a single-dose injection.  PNAS.  2014,111(41):14900-5.
7.Magnetoferritin nanoparticles for targeting and visualizing tumour tissues. Nature Nanotechnol . 2012, 7(7):459-64.
8.Liang M, Fan K, Pan Y, Jiang H, Wang F, Yang D, Lu D, Feng J, Zhao J, Yang L, Yan X., Fe3O4 Magnetic nanoparticle peroxidase mimetic-based colorimetric assay for the rapid detection of organophosphorus pesticide and nerve agent. Anal. Chem . 2013, 85(1):308-12.
9.Photoelectrochemical DNA sensor for the rapid detection of DNA damage induced by styrene oxide and the Fenton reaction, Environ. Sci. Technol. , 2007, 41(2): 658-664.
10.Photoelectrochemical sensor for the rapid detection of in-situ DNA damage induced by enzyme-catalyzed Fenton reaction, Environ. Sci. Technol. , 2008, 42 (2): 635-639.
11.Photoelectrochemical oxidation of DNA by ruthenium tris(bipyridine) on a tin oxide nanoparticle electrode, Anal. Chem. , 2006, 78 (2): 621-623.
12.Ex Vivo  Detection of Iron Oxide Magnetic Nanoparticles in Mice Using Their Intrinsic Peroxidase-Mimicking Activity. Mol. Pharm.  2012, 9(7), 1983-1989.
13.Reducing the background fluorescence in mice receiving fluorophore/inhibitor DNA duplexes.  Mol. Pharm. 2011, 8(1):
14.Multimodality nuclear and fluorescence tumor imaging in mice using a streptavidin nanoparticle. Bioconjug. Chem.  2010, 21(7):1385-8.
15.Optical antisense tumor targeting in vivo with an improved fluorescent DNA duplex probe. Bioconjug. Chem.  2009, 20(6):1223-7.
16. A convenient thiazole orange fluorescence assay for the evaluation of DNA duplex hybridization stability. Mol. Imaging Biol. 2009, 11(6):439-45.
17.Application of nanomaterials in environmental analysis and monitoring. J. Nanosci Nanotechnol. 2009, 9(4):2283-2289.
18.Gas chromatography-mass spectrometry analysis of volatile compounds from Houttuynia cordata Thunb  after extraction by solid-phase microextraction, flash evaporation and steam distillation, Anal. Chim. Acta ,  2005, 531 (1): 97-104.
19.Peralkylated-beta-cyclodextrin used as gas chromatographic stationary phase prepared by sol-gel technology for capillary column, J. Chromatogr. A , 2004, 1059 (1-2): 111-119.
20.Multimodality radionuclide and fluorescent tumor imaging in mice using a streptavidin nanoparticle.  Journal of Nuclear Medicine,  2010，51(supplement 2), 1008  

daka

低廉等特点，使其成为了天然酶的有力替代者。同时，单原子纳米酶对原子的高效利用率及其可设计的立体结构和电子结构赋予了它本身很高的催化活性和选择性。基于此，单原子纳米酶在肿瘤治疗、分子检测、细菌和病毒杀灭以及抗氧化等领域有着广泛的应用。对最新单原子纳米酶研究进行归纳总结，有利于拓展后续单原子纳米酶的设计、制备及其推广应用。

       北京理工大学梁敏敏团队在本综述中对不同单原子纳米酶模仿天然酶的催化中心结构和催化活性展开，对近年来单原子纳米酶在肿瘤治疗、生化分析、杀菌、抗病毒、抗氧化等领域的应用进行了深入的探讨。最后，该综述总结了单原子纳米酶目前面临的挑战，比如：催化活性和选择性仍有提升空间，催化反应种类较少以及生物安全性的问题，并对其未来的发展进行了一定的展望，以期可以为构建高性能的单原子纳米酶提供一定的支持。
       文章信息：B. Jiang, Z. Guo, M. Liang, Recent progress in single-atom nanozymes research. Nano Research. https://doi.org/10.1007/s12274-022-4856-7.